Никотин әчелеге

Никотин кислотасы (ниацин) холестеринны киметүче препараттан гыйбарәт, аның берничә каршы йогынтысы бар, шуларга тире кызару, кычыту, косасы килү һәм эч авырту керә. Кайбер авыруларда КМШ'га охшаган, ләкин ФАГ'дә үтеп чыгусыз кистоз макулопатия үсеш ала.

Никотин әчелеге
Химическая структура
Масса 123,032 м.а.б.[1]
Химик фурмула C₆H₅NO₂[1]
SMILES фурмуласы C1=CC(=CN=C1)C(=O)O[1]
Эрү температурасы 238 °C[2]
Куркынычсызлык классификациясе һәм билгеләнеше NFPA 704: гадәттән тыш хәлләргә җавап бирү өчен куркыныч матдәләр стандарт идентификацияләү системасы[d]
Установленная суточная доза 2 грамм[3]
Является активным ингредиентом в Niaspan[d][4], B3-500-Gr[d][4] һәм Niacor[d][4]
Международное непатентованное название ВОЗ nicotinic acid[5]
Нинди таксонда бар H. sapiens[d][6][7][8][…], A. sinensis[d][9][10][11][…], A. taiwanensis[d][12][13], B. nantoensis[d][14][15], C. filiformis[d][16], U. vinacea[d][17], N. tabacum[d][18], A. acutiloba[d][11], A. cherimola[d][19], A. unedo[d][20], A. kaempferi[d][21], Artemia salina[d][22], C. edulis[d][23], C. pilosula[d][24], C. arabica[d][25], C. canephora[d][25], D. metel[d][23], D. stramonium[d][23], D. lanata[d][23], D. purpurea[d][23], E. lancifolia[d][26][27], G. max[28], G. glabra[d][23], H. muticus[d][23], N. plumbaginifolia[d][29], P. somniferum[d][23], P. crispum[d][30], P. blakesleeanus[d][31], L. oleraceus[32][33], S. tuberosum[34], O. sinensis[d][35], A. catechu[d][36], E. longifolia[d][37], G. trojanus[d][38], P. citrinopileatus[d][39], G. furcata[d][40], P. umbellatus[d][41], N. undulata[d][18], K. hybrida[d][42], C. elegans[d][43][44], A. fumigatus[d][45], P. vulgaris[d][46], томат[d][47], A. melanocarpa[48], M. struthiopteris[d][49], K. spathulata[d][42], K. integra[d][42], E. coli[d][50][51], K. lanceolata[d][42], K. deficiens[d][42] һәм D. alata[d][52]
Дәвалау өчен кулланыла пеллагра[d][53] һәм familial hyperlipidemia[d][53]
Тәэсир итешә Hydroxycarboxylic acid receptor 1[d][54], Hydroxycarboxylic acid receptor 2[d][54] һәм Hydroxycarboxylic acid receptor 3[d][54]
MCN коды 2936.29.51
 Никотин әчелеге Викиҗыентыкта

Көненә 1,5 г-нан артык дозада макуляр үзгәрешләр күзәтелә, бу күрү үткенлегенең уртача кимүенә китерә һәм препарат туктатылганнан соң юкка чыга.

Искәрмәләр

үзгәртү
  1. 1,0 1,1 1,2 nicotinic acid
  2. Bradley J., Williams A., Andrew S.I.D. Lang Jean-Claude Bradley Open Melting Point Dataset // Figshare — 2014. — doi:10.6084/M9.FIGSHARE.1031637.V2
  3. https://www.whocc.no/atc_ddd_index/?code=C10AD02
  4. 4,0 4,1 4,2 RxNorm
  5. nicotinic acidEBI.
  6. Gardiner N. J., Lakshmanan M., Martínez V. S. et al. Recon 2.2: from reconstruction to model of human metabolism // MetabolomicsSpringer Science+Business Media, 2016. — ISSN 1573-3882; 1573-3890doi:10.1007/S11306-016-1051-4PMID:27358602
  7. Soga T., Sugimoto M. Physiological and environmental parameters associated with mass spectrometry-based salivary metabolomic profiles // MetabolomicsSpringer Science+Business Media, 2012. — ISSN 1573-3882; 1573-3890doi:10.1007/S11306-012-0464-Y
  8. Zimmermann R., Zechner R. Adipose tissue as a source of nicotinamide N-methyltransferase and homocysteine // AtherosclerosisElsevier BV, 2008. — ISSN 0021-9150; 1879-1484doi:10.1016/J.ATHEROSCLEROSIS.2008.09.015PMID:18996527
  9. DP Z. Dong quai // Am. J. Chin. Med.World Scientific, 1987. — ISSN 0192-415X; 1793-6853doi:10.1142/S0192415X87000151PMID:3425569
  10. Upton R. Dong Quai — 2013. — doi:10.1201/B14669-29
  11. 11,0 11,1 SJ S., YS H., YP C. et al. Analysis and processing of Chinese herbal drugs; VI. The study of Angelicae radix // Planta Med.Thieme Medical Publishers (Germany), 1987. — 2 p. — ISSN 0032-0943; 1439-0221doi:10.1055/S-2006-962742PMID:3671555
  12. Chan Y., Wu T., Kuoh C. S. et al. A new phytoecdysteroid from Ajuga taiwanensis // Chemical & Pharmaceutical BulletinPharmaceutical Society of Japan, 2005. — ISSN 0009-2363; 1347-5223doi:10.1248/CPB.53.836PMID:15997147
  13. Chan Y., Wu T., Kuoh C. S. et al. A New Phytoecdysteroid from Ajuga taiwanensis. // ChemInformWiley Information Services GmbH, Fachinformationszentrum Chemie GmbH (FIZ CHEMIE Berlin), 2005. — ISSN 0931-7597; 1522-2667; 1431-5890doi:10.1002/CHIN.200550175
  14. Lee K. Cytotoxic and anti-HIV principles from the rhizomes of Begonia nantoensis // Chemical & Pharmaceutical BulletinPharmaceutical Society of Japan, 2004. — ISSN 0009-2363; 1347-5223doi:10.1248/CPB.52.345PMID:14993759
  15. Lee K. Cytotoxic and anti-HIV Principles from the Rhizomes of Begonia nantoensis. // ChemInformWiley Information Services GmbH, Fachinformationszentrum Chemie GmbH (FIZ CHEMIE Berlin), 2004. — ISSN 0931-7597; 1522-2667; 1431-5890doi:10.1002/CHIN.200434239
  16. Tsai T., Wang G., Lin L. Vasorelaxing alkaloids and flavonoids from Cassytha filiformis // J. Nat. Prod.ACS, 2008. — ISSN 0163-3864; 1520-6025doi:10.1021/NP070564HPMID:18217715
  17. AG S., JB G., DT W. Antifungal and antibacterial metabolites from a sclerotium-colonizing isolate of Mortierella vinacea // J. Nat. Prod.ACS, 1999. — ISSN 0163-3864; 1520-6025doi:10.1021/NP980411HPMID:10075797
  18. 18,0 18,1 Heim W. G., Sykes K. A., Hildreth S. B. et al. Cloning and characterization of a Nicotiana tabacum methylputrescine oxidase transcript // PhytochemistryElsevier BV, 2007. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/J.PHYTOCHEM.2006.11.003PMID:17174363
  19. Chen C., Chang F., Teng C. et al. Cheritamine, A NewN-Fatty Acyl Tryptamine and Other Constituents from the Stems ofAnnona cherimola // Journal of the Chinese Chemical SocietyWiley-Blackwell, 1999. — ISSN 0009-4536; 0375-8745; 2192-6549doi:10.1002/JCCS.199900010
  20. M.L.C.M.M. Alarcão-E-Silva, A.E.B. Leitão, H.G. Azinheira et al. The Arbutus Berry: Studies on its Color and Chemical Characteristics at Two Mature Stages // J. Food Comp. Anal.Elsevier BV, 2001. — ISSN 0889-1575; 1096-0481doi:10.1006/JFCA.2000.0962
  21. WU T., LEU Y., CHAN Y. Constituents of the Leaves of Aristolochia kaempferi. // Chemical & Pharmaceutical BulletinPharmaceutical Society of Japan, 1998. — ISSN 0009-2363; 1347-5223doi:10.1248/CPB.46.1624
  22. M. Gallagher, Brown W. D. Composition of San Francisco bay brine shrimp (Artemia salina), Composition of San Francisco Bay brine shrimp (Artemia salina) // J. Agric. Food Chem.USA: ACS, 1975. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF60200A008PMID:1141506
  23. 23,0 23,1 23,2 23,3 23,4 23,5 23,6 23,7 HEWITT W., VINCENT S. MICROBIOLOGICAL ASSAY: AN OVERVIEW — 2014. — doi:10.1016/B978-0-12-346445-3.50005-2
  24. Liu B., Qin F. Two New Triterpenoids from the Roots of Codonopsis pilosula // MoleculesMDPI, 2018. — ISSN 1420-3049; 1431-5157doi:10.3390/MOLECULES23020383PMID:29439445
  25. 25,0 25,1 S. Casal, Oliveira M. B., Ferreira M. A. Development of an HPLC/Diode-Array Detector Method for Simultaneous Determination of Trigonelline, Nicotinic Acid, and Caffeine in Coffee // Journal of Liquid Chromatography and Related TechnologiesMarcel Dekker, Taylor & Francis, 1998. — ISSN 1082-6076; 1520-572X; 0148-3919doi:10.1080/10826079808001267
  26. Jr R. F. A neglected Mayan galactagogue - ixbut (Euphorbia lancifolia). // J. Ethnopharmacol.Elsevier BV, 1982. — ISSN 0378-8741; 1872-7573doi:10.1016/0378-8741(82)90024-1PMID:7033669
  27. Rosengarten F. A Neglected Mayan Galactagogue. Ixbut (Euphorbia lancifolia) // Botanical Museum LeafletsCambridge, Mass: 2021. — ISSN 0006-8098doi:10.5962/P.295216
  28. Vedrina-Dragojević I. Dynamics of the Biosynthesis of Niacin During Development to Maturity of Soybean Seed // Journal of Agronomy and Crop Science — 2008. — ISSN 0931-2250; 1439-037Xdoi:10.1111/J.1439-037X.1991.TB00948.X
  29. Manceau F., Fliniaux M., Jacquin-Dubreuil A. A high performance liquid chromatographic procedure for the analysis of tobacco alkaloids--Application to the evaluation of tobacco alkaloids in plants and cell suspension cultures // Phytochem. Anal.Wiley, 2007. — ISSN 0958-0344; 1099-1565doi:10.1002/PCA.2800030205
  30. Schwenen L., Komoßa D., Barz W. Metabolism and Degradation of Nicotinic Acid in Parsley (Petroselinum hortense) Cell Suspension Cultures and Seedlings // Z. Naturforsch. C Bio. Sci. / J. SeibelDe Gruyter, 2018. — ISSN 0939-5075; 1865-7125doi:10.1515/ZNC-1986-1-222
  31. Barrero A. F., Oltra J. E., Poyatos J. A. Acidic metabolites from Phycomyces blakesleeanus // PhytochemistryElsevier BV, 1996. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/0031-9422(96)00146-X
  32. Tramontano W. A., Lynn D. G., Evans L. S. Trigonelline, nicotinic acid and nicotinamide in seedlings of Pisum sativum // PhytochemistryElsevier BV, 2002. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/S0031-9422(00)86960-5
  33. Z. El-Hawary, El-Shobaki F. A. Vitamins content of fruits and vegetables in common use in Egypt // European Journal of NutritionSpringer Science+Business Media, 1977. — 5 p. — ISSN 1436-6207; 1436-6215; 0044-264X; 1435-1293doi:10.1007/BF02024787PMID:919638
  34. Bushway A. A., Bureau J. L., Bergeron D. et al. The nutrient and glycoalkaloid content of a new potato meal // American Journal of Potato ResearchSpringer Science+Business Media, 2008. — ISSN 1099-209X; 1874-9380doi:10.1007/BF02854349
  35. Kuo P., Hwang T. Anti-inflammatory principles from Cordyceps sinensis, Anti-inflammatory Principles from Cordyceps sinensis // J. Nat. Prod.ACS, 2011. — ISSN 0163-3864; 1520-6025doi:10.1021/NP100902FPMID:21848266
  36. D.K. Holdsworth, R.A. Jones, R. Self Volatile alkaloids from Areca catechu // PhytochemistryElsevier BV, 1998. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/S0031-9422(98)00016-8
  37. Lee K. Cytotoxic and antimalarial constituents from the roots of Eurycoma longifolia // Bioorganic & Medicinal ChemistryElsevier BV, 2004. — ISSN 0968-0896; 1464-3391doi:10.1016/J.BMC.2003.11.017PMID:14738962
  38. Viladomat F., Bastida J., Kaiser M. et al. Antiprotozoal alkaloids from Galanthus trojanus // Phytochemistry LettersElsevier BV, 2011. — 5 p. — ISSN 1874-3900; 1876-7486doi:10.1016/J.PHYTOL.2011.05.008
  39. Hu S. H., Liang Z. C., Chia Y. C. et al. Antihyperlipidemic and antioxidant effects of extracts from Pleurotus citrinopileatus // J. Agric. Food Chem.USA: ACS, 2006. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF052890DPMID:16536582
  40. Fang Z., Jeong S. Y., Jung H. A. et al. Anticholinesterase and antioxidant constituents from Gloiopeltis furcata, Anticholinesterase and Antioxidant Constituents from Gloiopeltis furcata // Chemical & Pharmaceutical BulletinPharmaceutical Society of Japan, 2010. — ISSN 0009-2363; 1347-5223doi:10.1248/CPB.58.1236PMID:20823607
  41. Zhao Y. 1β-hydroxylfriedelin, a new natural pentacylic triterpene from the sclerotia of Polyporus umbellatus // Journal of Chemical Research — 2009. — ISSN 0308-2342; 1364-5560; 0308-2350; 1747-5198doi:10.3184/030823409X12562954717147
  42. 42,0 42,1 42,2 42,3 42,4 Kuo P., Kuo T., Su C. et al. Cytotoxic principles and α-pyrone ring-opening derivatives of bufadienolides from Kalanchoe hybrida // TetrahedronElsevier BV, 2008. — ISSN 0040-4020; 1464-5416doi:10.1016/J.TET.2008.01.090
  43. Novère N. L., Witting M., Hastings J. et al. Modeling Meets Metabolomics-The WormJam Consensus Model as Basis for Metabolic Studies in the Model Organism // Frontiers in molecular biosciencesFrontiers Media, 2018. — ISSN 2296-889Xdoi:10.3389/FMOLB.2018.00096PMID:30488036
  44. Leroi A. M. Cross-platform comparison of Caenorhabditis elegans tissue extraction strategies for comprehensive metabolome coverage, Cross-Platform Comparison of Caenorhabditis elegans Tissue Extraction Strategies for Comprehensive Metabolome Coverage // Anal. Chem. / J. V. SweedlerACS, 2011. — ISSN 0003-2700; 1520-6882doi:10.1021/AC2001109PMID:21480661
  45. Frisvad J. C., Nielsen K. F., Larsen T. O. et al. Metabolomics of Aspergillus fumigatus // Med. Mycol.OUP, 2008. — ISSN 1369-3786; 1460-2709doi:10.1080/13693780802307720PMID:18763205
  46. Saito K. Metabolite Profiling of Root Exudates of Common Bean under Phosphorus Deficiency // MetabolitesMDPI, 2014. — ISSN 2218-1989doi:10.3390/METABO4030599PMID:25032978
  47. Ligterink W., Hilhorst H. W. Metabolomic analysis of tomato seed germination // MetabolomicsSpringer Science+Business Media, 2017. — ISSN 1573-3882; 1573-3890doi:10.1007/S11306-017-1284-XPMID:29104520
  48. TANAKA T., TANAKA A. Chemical Components and Characteristics of Black Chokeberry. // Journal of the Japanese Society for Food Science and Technology — 2011. — ISSN 1341-027X; 1881-6681doi:10.3136/NSKKK.48.606
  49. BUSHWAY A. A., SERREZE D. V., McGANN D. F. et al. Effect of Processing Method and Storage Time on the Nutrient Composition of Fiddlehead Greens // Journal of Food ScienceInstitute of Food Technologists, 2006. — ISSN 0022-1147; 1750-3841doi:10.1111/J.1365-2621.1985.TB10508.X
  50. Lerman J. A., Nam H., Palsson B. Ø. et al. A comprehensive genome-scale reconstruction of Escherichia coli metabolism--2011. // Mol. Syst. Biol. / R. AebersoldEMBO, Wiley, 2011. — ISSN 1744-4292doi:10.1038/MSB.2011.65PMID:21988831
  51. Hove-Jensen B., Haldimann A., Rosenkrantz T. J. et al. Escherichia coli phnN, encoding ribose 1,5-bisphosphokinase activity (phosphoribosyl diphosphate forming): dual role in phosphonate degradation and NAD biosynthesis pathways, Escherichia coli phnN , Encoding Ribose 1,5-Bisphosphokinase Activity (Phosphoribosyl Diphosphate Forming): Dual Role in Phosphonate Degradation and NAD Biosynthesis Pathways // J. Bacteriol. / T. J. SilhavyBaltimore: ASM, 2003. — ISSN 0021-9193; 1098-5530; 1067-8832doi:10.1128/JB.185.9.2793-2801.2003PMID:12700258
  52. Mantri N. Transciptome analysis reveals flavonoid biosynthesis regulation and simple sequence repeats in yam (Dioscorea alata L.) tubers // BMC GenomicsBMC, Springer Science+Business Media, 2015. — ISSN 1471-2164doi:10.1186/S12864-015-1547-8PMID:25924983
  53. 53,0 53,1 NDF-RT
  54. 54,0 54,1 54,2 IUPHAR/BPS Guide to PHARMACOLOGY

Чыганаклар

үзгәртү
  • Джек Кански. Клиник офтальмология. Системалаштырылган караш. / редакторлар: Еричева В.П.. — 2009. — Б. 944. — ISBN 83-7609-034-8.