Алма әчелеге

Алма әчелеге (НООС-СН2-СН(ОН)-СООН) - ике нигезле оксикарбон әчелеге; тозлары малатлар дип атала. Җитешмәгән алма, йөзем, миләш, барбарис, кура җиләге, әфлисун, мандарин, лимон һ.б.н. эчендә бар. Азык-төлек сәнәгатендә (азык өстәмәсе буларак), медицинада кулланыла.

  1. 1,0 1,1 1,2 malic acid
  2. Kurkin V. A., Zapesochnaya G. G., Klyaznika V. G. Flavonoids of the rhizomes ofRhodiola rosea. I. Tricin glucosides // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/BF00575035
  3. CE T., MA E., EG B. Constituents of Cannabis sativa L. XVII. A review of the natural constituents. // J. Nat. Prod.American Chemical Society, 1980. — ISSN 0163-3864; 1520-6025doi:10.1021/NP50008A001PMID:6991645
  4. Lexa A, Fleurentin J, PR L. et al. Choleretic and hepatoprotective properties of Eupatorium cannabinum in the rat. // Planta Med.Thieme Medical Publishers (Germany), 1989. — ISSN 0032-0943; 1439-0221doi:10.1055/S-2006-961904PMID:2748727
  5. KOZUKUE E., KOZUKUE N., KUROSAKI T. Organic Acid, Sugar and Amino Acid Composition of Bamboo Shoots // Journal of Food ScienceInstitute of Food Technologists, 2006. — ISSN 0022-1147; 1750-3841doi:10.1111/J.1365-2621.1983.TB14934.X
  6. Polyakov V. V., Orlov V. K., R. Zh. Shukenova et al. Carboxylic acids ofPopulus balsamifera // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/BF00576226
  7. 7,0 7,1 7,2 7,3 7,4 7,5 7,6 J. Soušek, D. Guédon, T. Adam et al. Alkaloids and organic acids content of eightFumaria species // Phytochem. Anal.Wiley, 2002. — ISSN 0958-0344; 1099-1565<6::AID-PCA431>3.0.CO;2-0 doi:10.1002/(SICI)1099-1565(199901/02)10:1<6::AID-PCA431>3.0.CO;2-0
  8. 8,0 8,1 C. Barbas, J. A. Lucas García, F. J. Gutiérrez Mañero Separation and identification of organic acids in root exudates ofLupinus luteus by capillary zone electrophoresis // Phytochem. Anal.Wiley, 2005. — ISSN 0958-0344; 1099-1565<55::AID-PCA437>3.0.CO;2-I doi:10.1002/(SICI)1099-1565(199903/04)10:2<55::AID-PCA437>3.0.CO;2-I
  9. Agrawal B., Lakshmanan V., Kaushik S. et al. Natural variation among Arabidopsis accessions reveals malic acid as a key mediator of Nickel (Ni) tolerance. // PlantaSpringer-Verlag, 2012. — ISSN 0032-0935; 1432-2048; 1866-2749doi:10.1007/S00425-012-1621-2PMID:22411507
  10. Jonsson P., Kusano M., Saito K. Unbiased characterization of genotype-dependent metabolic regulations by metabolomic approach in Arabidopsis thaliana // BMC Syst. Biol.BMC, Springer-Verlag, 2007. — ISSN 1752-0509doi:10.1186/1752-0509-1-53PMID:18028551
  11. Saito K., Fukushima A., Kusano M. et al. Metabolomic correlation-network modules in Arabidopsis based on a graph-clustering approach // BMC Syst. Biol.BMC, Springer-Verlag, 2011. — ISSN 1752-0509doi:10.1186/1752-0509-5-1PMID:21194489
  12. 12,0 12,1 12,2 12,3 Boyes S., Strübi P., Marsh H. Sugar and Organic Acid Analysis ofActinidia argutaand Rootstock–Scion Combinations ofActinidia arguta // Lebensm. Wiss. Technol.Elsevier, 2002. — ISSN 0023-6438; 1096-1127doi:10.1006/FSTL.1996.0201
  13. Aloe Vera — 2019. — doi:10.21019/PFDI.ALOEVERA
  14. 14,0 14,1 A. Sattikulov, Sh. V. Abdullaev, É. Kh. Batirov et al. Organic acids ofAmmothamnus lehmannii // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/BF00575055
  15. F.A. Ayaz, M. Kucukislamoglu, M. Reunanen Sugar, Non-volatile and Phenolic Acids Composition of Strawberry Tree (Arbutus unedo L. var.ellipsoidea ) Fruits // J. Food Comp. Anal.Elsevier, 2002. — ISSN 0889-1575; 1096-0481doi:10.1006/JFCA.1999.0868
  16. SUGAR BEET (Beta vulgaris) — 2008. — doi:10.1007/978-1-4020-4585-1_2617
  17. M.-Y Ding, P.-R Chen, G.-A Luo Simultaneous determination of organic acids and inorganic anions in tea by ion chromatography // J. Chromatogr. AElsevier, 2002. — ISSN 1873-3778; 0021-9673doi:10.1016/S0021-9673(96)00910-7
  18. Marigo G., Bouyssou H., Belkoura M. Vacuolar efflux of malate and its influence of nitrate accumulation in Catharanthus roseus cells // Plant ScienceElsevier, 2003. — ISSN 0168-9452; 1873-2259doi:10.1016/0168-9452(85)90099-8
  19. Timpa J. D., Burke J. J. Monitoring organic acids and carbohydrates in cotton leaves by high-performance liquid chromatography // J. Agric. Food Chem.USA: American Chemical Society, 2005. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF00071A036
  20. S G von Eggelkraut-Gottanka, Abed S. A., W Müller et al. Quantitative analysis of the active components and the by-products of eight dry extracts of Hypericum perforatum L. (St John's Wort). // Phytochem. Anal.Wiley, 2002. — ISSN 0958-0344; 1099-1565doi:10.1002/PCA.638PMID:12099108
  21. Picha D. H. Organic acid determination in sweet potatoes by HPLC // J. Agric. Food Chem.USA: American Chemical Society, 2005. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF00064A045
  22. T Pohl, C Koorbanally, Crouch N. R. et al. Secondary metabolites of Scilla plumbea, Ledebouria cooperi and Ledebouria ovatifolia (Hyacinthaceae). // Biochem. Syst. Ecol.Elsevier, 2001. — ISSN 0305-1978; 1873-2925doi:10.1016/S0305-1978(01)00027-8PMID:11412959
  23. UEDA M., SASAKI K., UTSUNOMIYA N. һ.б. Changes in Physical and Chemical Properties during Maturation of Mango Fruit(Mangifera indica L. 'Irwin') Cultured in a Plastic Greenhouse. // Food Science and Technology ResearchKarger Publishers, 2007. — ISSN 1344-6606; 1341-7592; 1881-3976; 1881-3984doi:10.3136/FSTR.6.299
  24. Lalaguna F. Purification of fresh cassava root polyphenols by solid-phase extraction with Amberlite XAD-8 resin // J. Chromatogr. AElsevier, 2002. — ISSN 1873-3778; 0021-9673doi:10.1016/0021-9673(93)80301-N
  25. F. Koyuncu Organic Acid Composition of Native Black Mulberry Fruit // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1023/B:CONC.0000048249.44206.E2
  26. F. F. Feitosa Teles, J. Warren Stull, Brown W. H. et al. Amino and organic acids of the prickly pear cactus (Opuntia ficus indica L.) // J. Sci. Food Agric.Wiley, 2006. — ISSN 0022-5142; 1097-0010doi:10.1002/JSFA.2740350410
  27. Djerassi C. The Non-volatile Acids of Succulent Plants Exhibiting a Marked Diurnal Oscillation in their Acid Content. II. Demonstration of Piscidic Acid as one of the Predominating Acids in Opuntia ficus-indica L.. // Acta Chemica ScandinavicaRSC, 2008. — ISSN 0904-213X; 0001-5393doi:10.3891/ACTA.CHEM.SCAND.20-1431
  28. Barrero A. F., Oltra J. E., Poyatos J. A. Acidic metabolites from Phycomyces blakesleeanus // PhytochemistryElsevier, 2003. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/0031-9422(96)00146-X
  29. KAZUNO C., MIURA H. Studies on constituent of edible fungi. Part II. Chemical constituents of Pleurotus ostreatus. // Journal of the Japanese Society for Food Science and Technology — 2011. — ISSN 1341-027X; 0029-0394; 1881-6681doi:10.3136/NSKKK1962.32.338
  30. W. Greenaway, T. Scaysbrook, F.R. Whatley Phenolic analysis of bud exudate of Populus lasiocarpa by GC/MS // PhytochemistryElsevier, 2002. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/0031-9422(88)80758-1
  31. Parry O, JA M., FK O. The skeletal muscle relaxant action of Portulaca oleracea: role of potassium ions. // J. Ethnopharmacol.Elsevier, 1993. — ISSN 0378-8741; 1872-7573doi:10.1016/0378-8741(93)90067-FPMID:8145574
  32. Y Chuda, H Ono, M Ohnishi-Kameyama et al. Mumefural, citric acid derivative improving blood fluidity from fruit-juice concentrate of Japanese apricot (Prunus mume Sieb. et Zucc) // J. Agric. Food Chem.USA: American Chemical Society, 1999. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF980960TPMID:10552374
  33. Kuliev V. B., Gusarova N. V. Components of the fruit ofRosa nisami // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/BF00574362
  34. Plekhanova T. I., Bandyukova V. A., F. Kh. Bairamkulova Chemical components of the fruit ofRosa spinosissima // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/BF00713334
  35. MATSUI T., KITAGAWA H. Seasonal changes of cis-aconitic and malic acid contents in sugarcane. // Journal of the Japanese Society for Food Science and Technology — 2011. — ISSN 1341-027X; 0029-0394; 1881-6681doi:10.3136/NSKKK1962.33.10_740
  36. 36,0 36,1 J. Karovičová, J. Polonský, A. Príbela Composition of organic acids of Sambucus nigra and Sambucus ebulus // Mol. Nutr. Food Res.Wiley-Blackwell, 2006. — ISSN 1613-4125; 0027-769X; 1521-3803; 1613-4133doi:10.1002/FOOD.19900340716
  37. R. Tundis Chemical Composition of and Inhibition of Angiotensin-Converting Enzyme bySenecio samnitum huet // Pharm. Biol.Informa, Taylor & Francis, 2005. — ISSN 1388-0209; 1744-5116doi:10.1080/13880200500301886
  38. BUSHWAY R. J., BUREAU J. L., MCGANN D. F. Determinations of Organic Acids in Potatoes by High Performance Liquid Chromatography // Journal of Food ScienceInstitute of Food Technologists, 2006. — ISSN 0022-1147; 1750-3841doi:10.1111/J.1365-2621.1984.TB13673.X
  39. 39,0 39,1 Saleem R., Ahmad M., Naz A. et al. Hypotensive and toxicological study of citric acid and other constituents from Tagetes patula roots. // Archives of Pharmacal ResearchSpringer-Verlag, Springer Nature, 2004. — ISSN 0253-6269; 1976-3786doi:10.1007/BF02975428PMID:15554261
  40. Rustanbekov R. B., Gadzhieva T. G., S. Sh. Mamedov Components of Telekia speciosa // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/BF00633415
  41. F. Yu. Kasumov, Gadzhieva T. G. Components ofThymus transcaucasicus // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/BF00575075
  42. 42,0 42,1 42,2 42,3 Krogfelt K. A., Cornett C., Christensen S. B. Hydrophilic carboxylic acids and iridoid glycosides in the juice of American and European cranberries (Vaccinium macrocarpon and V. oxycoccos), lingonberries (V. vitis-idaea), and blueberries (V. myrtillus). // J. Agric. Food Chem.USA: American Chemical Society, 2002. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF0205110PMID:12405790
  43. Seeram N. P., Adams L. S., Hardy M. L. et al. Total cranberry extract versus its phytochemical constituents: antiproliferative and synergistic effects against human tumor cell lines. // J. Agric. Food Chem.USA: American Chemical Society, 2004. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF0352778PMID:15113149
  44. Coppola E. D., Conrad E. C., Cotter R. High Pressure Liquid Chromatographic Determination of Major Organic Acids in Cranberry Juice // Journal of the Association of Official Analytical Chemists — 2020. — ISSN 0004-5756doi:10.1093/JAOAC/61.6.1490
  45. Jones O. Mixtures of similarly acting compounds in Daphnia magna: from gene to metabolite and beyond // Environ. Int.Elsevier, 2010. — ISSN 0160-4120; 1873-6750doi:10.1016/J.ENVINT.2009.12.006PMID:20117838
  46. Dong W., Li M., Yang D. et al. Two new sesquiterpenes from Acorus calamus. // Planta Med.Thieme Medical Publishers (Germany), 2010. — ISSN 0032-0943; 1439-0221doi:10.1055/S-0030-1249833PMID:20419623
  47. Olennikov D. N., Ibragimov T. A., V. A. Chelombit′ko et al. Chemical composition of Aloe arborescens and its change by biostimulation // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2009. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/S10600-009-9405-Z
  48. 48,0 48,1 Wolf J. Beobachtungen über Veränderungen des Gehaltes an organischen Säuren im Blutungssaft von Birke (Betula alba) und Ahorn (Acer Pseudoplatanus) // PlantaSpringer-Verlag, 2005. — ISSN 0032-0935; 1432-2048; 1866-2749doi:10.1007/BF01909325
  49. 49,0 49,1 Olennikov D. N., Tankhaeva L. M., Nikolaeva G. G. et al. Biologically Active Compounds from Cacalia hastate Leaves. 3. Organic Acids // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2004. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1023/B:CONC.0000039145.63701.2F
  50. Jayasinghe L., Lakdusinghe M., Hara N. et al. Phenolic constituents from the fruit juice of Flacourtia inermis // Nat. Prod. Res.Taylor & Francis, 2011. — ISSN 1478-6419; 1478-6427; 1026-8049; 1057-5634; 1029-2349doi:10.1080/14786419.2011.586638PMID:21985676
  51. Schmalfuss H., Keitel K. Vorarbeiten für den Nachweis von Säuren in Pflanzen. 2. Mitteilung. Über Pflanzensäuren aus Glaucium und über dessen Blütenfarbstoffe. // Hoppe-Seyler's Zeitschrift für physiologische ChemieB: Verlag Walter de Gruyter, 2011. — ISSN 0018-4888doi:10.1515/BCHM2.1924.138.3-6.156
  52. Olennikov D. N., Agafonova S. V., Nazarova A. V. et al. Organic acids and carbohydrates from Laetiporus sulphureus fruiting bodies // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2009. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/S10600-009-9180-X
  53. Carbone V. Investigation of the tuber constituents of maca (Lepidium meyenii Walp.). // J. Agric. Food Chem.USA: American Chemical Society, 2002. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF020280XPMID:12236688
  54. Olennikov D. N., Mikhailova T. M., Tankhaeva L. M. et al. Organic Acids of Medicinal Plants. 1. Plantago major // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2005. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/S10600-005-0180-1
  55. Franzen H., Helwert F. Über die chemischen Bestandteile grüner Pflanzen. 20. Mitteilung. Über die Säuren der Kirschen (Prunus avium). // Hoppe-Seyler's Zeitschrift für physiologische ChemieB: Verlag Walter de Gruyter, 2011. — ISSN 0018-4888doi:10.1515/BCHM2.1922.122.1-3.46
  56. 56,0 56,1 56,2 Allsopp A Seasonal changes in the organic acids of rhubarb (Rheum hybridum) // Biochem. J.London [etc.]: Portland Press, 1937. — ISSN 0264-6021; 1470-8728doi:10.1042/BJ0311820PMID:16746521
  57. 57,0 57,1 57,2 W. Ruhland, K. Wetzel Zur Physiologie der organischen Säuren in grünen Pflanzen. III. Rheum hybridum Hort. (Vorläufige Mitteilung) // PlantaSpringer-Verlag, 2005. — ISSN 0032-0935; 1432-2048; 1866-2749doi:10.1007/BF01916508
  58. Chirikova N. K., Olennikov D. N., Rokhin A. V. Organic acids from medicinal plants. 4. Scutellaria baicalensis // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2008. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/S10600-008-0023-Y
  59. Hartwig Franzen †, Kaiser H. Über die chemischen Bestandteile grüner Pflanzen. XXVIII. Mitteilung. Über die durch Bleiacetat fällbaren Säuren der Tamarinden (Tamarindus indica). // Hoppe-Seyler's Zeitschrift für physiologische ChemieB: Verlag Walter de Gruyter, 2011. — ISSN 0018-4888doi:10.1515/BCHM2.1923.129.1-3.80
  60. M. Cam, Y. Hisil, A. Kuscu Organic acid, phenolic content, and antioxidant capacity of fruit flesh and seed of Viburnum opulus // Chemistry of Natural CompoundsSpringer-Verlag, 2007. — ISSN 0009-3130; 1573-8388; 0023-1150doi:10.1007/S10600-007-0161-7
  61. Yang X., Yin H., Borland A. M. et al. Transcript, protein and metabolite temporal dynamics in the CAM plant Agave. // Nature PlantsNPG, 2016. — ISSN 2055-0278; 2055-026Xdoi:10.1038/NPLANTS.2016.178PMID:27869799
  62. Hicks L. M., Gargouri M. The response of Chlamydomonas reinhardtii to nitrogen deprivation: a systems biology analysis. // The Plant JournalWiley-Blackwell, 2015. — ISSN 0960-7412; 1365-313Xdoi:10.1111/TPJ.12747PMID:25515814
  63. Choi H. Effects of coronatine elicitation on growth and metabolic profiles of Lemna paucicostata culture. // PLOS ONE / PLOS ONE EditorsPLoS, 2017. — ISSN 1932-6203doi:10.1371/JOURNAL.PONE.0187622PMID:29099862
  64. Redestig H., Hannah M. A., Kopka J. et al. Integrative functional genomics of salt acclimatization in the model legume Lotus japonicus // The Plant JournalWiley-Blackwell, 2007. — ISSN 0960-7412; 1365-313Xdoi:10.1111/J.1365-313X.2007.03381.XPMID:18047558
  65. Udvardi M. K., Kopka J. Mining for robust transcriptional and metabolic responses to long-term salt stress: a case study on the model legume Lotus japonicus. // Plant, Cell and Environment / A. AmtmannWiley-Blackwell, 2009. — ISSN 0140-7791; 1365-3040doi:10.1111/J.1365-3040.2009.02047.XPMID:19781009
  66. 66,0 66,1 Browning G. F., Masukagami Y., Souza D. D. et al. Comparative Metabolomics of Mycoplasma bovis and Mycoplasma gallisepticum Reveals Fundamental Differences in Active Metabolic Pathways and Suggests Novel Gene Annotations. // mSystemsASM, 2017. — ISSN 2379-5077doi:10.1128/MSYSTEMS.00055-17PMID:29034329
  67. Gupta R. An Integrated Biochemical, Proteomics, and Metabolomics Approach for Supporting Medicinal Value of Panax ginseng Fruits // Front. Plant Sci.Frontiers Media, 2016. — ISSN 1664-462Xdoi:10.3389/FPLS.2016.00994PMID:27458475
  68. 68,0 68,1 Liu F., Meng Y., He K. et al. Comparative analysis of proteomic and metabolomic profiles of different species of Paris // Journal of ProteomicsElsevier, 2019. — ISSN 1874-3919; 0165-022Xdoi:10.1016/J.JPROT.2019.02.003PMID:30890455
  69. Sokołowska K., Niittylä T., Hvidsten T. R. et al. A metabolite roadmap of the wood-forming tissue in Populus tremula // New PhytologistLondon: Wiley-Blackwell, 2020. — ISSN 0028-646X; 1469-8137doi:10.1111/NPH.16799PMID:32648607
  70. Le S. Transcriptomic and Metabolomics Profiling of Phage-Host Interactions between Phage PaP1 and Pseudomonas aeruginosa. // Frontiers in microbiologyFrontiers Media, 2017. — ISSN 1664-302Xdoi:10.3389/FMICB.2017.00548PMID:28421049
  71. Tian S., Wang C., Li Y. et al. The impact of slyA on cell metabolism of Salmonella Typhimurium: a joint study of transcriptomics and metabolomics // J. Proteome Res. / J. YatesAmerican Chemical Society, 2020. — ISSN 1535-3893; 1535-3907doi:10.1021/ACS.JPROTEOME.0C00281PMID:32969666
  72. Steinbeck C., Beisken S., Salek R. M. et al. Metabolic differences in ripening of Solanum lycopersicum 'Ailsa Craig' and three monogenic mutants // Scientific DataMacmillan Publishers, NPG, 2014. — ISSN 2052-4463doi:10.1038/SDATA.2014.29PMID:25977786
  73. Garcia P. G., Zanotta S., Eberlin M. N. et al. Metabolomics of Solanum lycopersicum Infected with Phytophthora infestans Leads to Early Detection of Late Blight in Asymptomatic Plants // MoleculesMDPI, 2018. — ISSN 1420-3049; 1431-5157doi:10.3390/MOLECULES23123330PMID:30558273
  74. Fiore C. L., Longnecker K., Melissa C Kido Soule һ.б. Release of ecologically relevant metabolites by the cyanobacterium Synechococcus elongates CCMP 1631. // Environmental MicrobiologyWiley-Blackwell, 2015. — ISSN 1462-2912; 1462-2920doi:10.1111/1462-2920.12899PMID:25970745
  75. Kopka J., Schwarz D. Metabolome phenotyping of inorganic carbon limitation in cells of the wild type and photorespiratory mutants of the cyanobacterium Synechocystis sp. strain PCC 6803. // Plant Physiol.American Society of Plant Biologists, 2008. — ISSN 0032-0889; 1532-2548doi:10.1104/PP.108.129403PMID:18945936
Алма әчелеге
Химическая структура
Масса 134,022 м.а.б.[1]
Химик фурмула C₄H₆O₅[1]
SMILES фурмуласы C(C(C(=O)O)O)C(=O)O[1]
Нинди таксонда бар Родиола розовая[d][2], конопля посевная[d][3], Посконник коноплевидный[d][4], Phyllostachys edulis[d][5], Тополь бальзамический[d][6], Fumaria agraria[d][7], Дымянка козья[d][7], Fumaria densiflora[d][7], Fumaria muralis[d][7], Дымянка лекарственная[d][7], Fumaria parviflora[d][7], Fumaria vaillantii[d][7], Люпин жёлтый[d][8], Резуховидка Таля[d][9][10][11][…], Актинидия острая[d][12], Actinidia chinensis[d][12], Actinidia hemsleyana[d][12], Актинидия полигамная[d][12], алоэ вера[d][13], Ammothamnus lehmannii[d][14], Земляничное дерево крупноплодное[d][15], свёкла обыкновенная[d][16], чай[d][17], Катарантус розовый[d][18], Хлопчатник обыкновенный[d][19], Зверобой продырявленный[d][20], батат[d][21], Ledebouria cooperi[d][22], мангифера индийская[d][23], Маниок[d][24], Шелковица чёрная[d][25], Опунция индийская[d][26][27], Phycomyces blakesleeanus[d][28], Вёшенка обыкновенная[d][29], Populus lasiocarpa[d][30], Портулак огородный[d][31], Слива японская[d][32], розасыманнар[33], Шиповник колючейший[d][34], Сахарный тростник культивируемый[d][35], Бузина травянистая[d][36], Бузина чёрная[d][36], Jacobaea alpina[d][37], бәрәңге[38], Бархатцы прямостоячие[d][39], Бархатцы мелкоцветные[d][39], Telekia speciosa[d][40], Thymus transcaucasicus[d][41], Vaccinium macrocarpon[d][42][43][44][…], Караҗиләк үсемлеге[d][42], Vaccinium oxycoccos[d][42], Нарат җиләге[42], Большая дафния[d][45], Кылычүлән[46], Алоэ древовидное[d][47], бөдрә каен[d][48], Betula pubescens pubescens[d][48], Cacalia hastata[d][49], Parasenecio hastata[d][49], Flacourtia inermis[d][50], Глауциум жёлтый[d][51], Трутовик серно-жёлтый[d][52], Мака перуанская[d][53], Подорожник большой[d][54], төче чия[55], Rheum hybridum[d][56][57], ревень[d][56][57], Шлемник байкальский[d][58], Тамаринд[d][59], Калина обыкновенная[d][60], Агава американская[d][61], Chlamydomonas reinhardtii[d][62], Ряска тропическая[d][63], Лядвенец рогатый[d][64][65], Mycoplasma bovis[d][66], Mycoplasma gallisepticum[d][66], Женьшень[d][67], Paris fargesii[d][68], Paris polyphylla[d][68], Осина[d][69], Синегнойная палочка[d][70], Salmonella enterica[d][71], томат[d][72][73], Synechococcus elongatus[d][74], Synechocystis[d][75], Ammodendron bifolium[d][14], Люпин[d][8] һәм ревень[d][56][57]
Тәэсир итешә Polycystin 2 like 1, transient receptor potential cation channel[d][76]
Commons-logo.svg Алма әчелеге Викиҗыентыкта